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蛋白质印迹技术在生物医学中的应用方法

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・适用技术・ 蛋白质印迹技术在生物医学中的应用方法 秦继迅 (遵义市生产力促进中心563000) 摘要:蛋白质印迹(Westen blrot)技术是通过聚丙烯酰胺电泳根据分子量大小分离蛋白后转移到 杂交膜上,然后通过一抗/二抗复合物对靶蛋白进行特异性检测的方法。蛋白质印迹技术进行蛋白质分 析最流行和作成熟的技术之一,超过60%的生命科学工作者使用该方法。 关键词:Western blot免疫转膜显色抗体 WestemBlot中文一般称为蛋白质印迹。它是 分子生物学、生物化学和免疫遗传学中常用的一种 持电泳分离的多肽类型及其生物学活性不变。以 固相载体上的蛋白质或多肽作为抗原,与对应的抗 反应,经过底物显色或放射自显影以检测电泳分离 的特异性目的基因表达的蛋白成分。该技术也广 泛应用于检测蛋白水平的表达。 实验方法。其基本原理是通过特异性抗体对凝胶 体起免疫反应,再与酶或同位素标记的第二抗体起 电泳处理过的细胞或生物组织样品进行着色。通 过分析着色的位置和着色深度获得特定蛋白质在 所分析的细胞或组织中的表达情况的信息。 蛋白质印迹的发明者一般认为是美国斯坦福 大学的乔治・斯塔克(GeorgeStark)。在尼尔・伯 奈特(NealBumette)于1981年所著的《分析生物化 学》(AnalyticalBiochemistry)中首次被称为Wester- nBlot。 2分类 WestemBlot显色的方法主要有以下几种: i.放射自显影 iiI底物化学发光ECL iii.底物荧光ECF 1原理 iv.底物DAB呈色 WesternBlot与Southern印迹杂交或Northern杂 现常用的有底物化学发光ECL和底物DAB呈 交方法类似,但WestemBlot采用的是聚丙烯酰胺 色,体同水平和实验条件的是用第一种方法,目前 凝胶电泳,被检测物是蛋白质,“探针”是抗体,“显 发表文章通常是用底物化学发光ECL。只要买现 色”用标记的二抗。经过PAGE分离的蛋白质样 成的试剂盒就行,操作也比较简单,原理如下(二 品,转移到固相载体(例如纤维素膜NC膜) 抗用HRP标记):反应底物为过氧化物+鲁米诺,如 上,固相载体以非共价键形式吸附蛋白质,且能保 遇到HRP,即发光,可使胶片曝光,就可洗出条带。 2010年荤l斑 ・逋用玟不。 3操作 效的进行转移。这种方法是用有孔的塑料和有机 提取细胞或组织蛋白、测定大致含量 制备SDS.PAGE胶 I 玻璃板将凝胶和纤维素膜夹成”三明治”形状, 而后浸入两个平行电极中间的缓冲液中进行电泳, 选择适当的电泳方向就可以使蛋白质离开凝胶结 合在纤维素膜上。转移后的纤维素膜就 称为一个印迹(blot),用于对蛋白质的进一步检 测。印迹首先用蛋白溶液(如10%的BSA)处理以 蛋白样品变性、电泳 J 电泳转膜 ; 封闭纤维素膜上剩余的疏水结合位点,而后用 所要研究的蛋白质的抗血清(一抗)处理,印迹中 只有待研究的蛋白质与一抗结合,而其它蛋白质不 与一抗结合,这样清洗去除未结合的一抗后,印迹 封闭 l 一抗 中只有待研究的蛋白质的位置上结合着一抗。处 TBST洗涤 l 理过的印迹进一步用适当标记的二抗处理,二抗是 指一抗的抗体,如一抗是从鼠中获得的,则二抗是 抗鼠Ig G的抗体。处理后,带有标记的二抗与一 抗结合,可以指示一抗的位置,即是待研究的蛋白 质的位置。目前有结合各种标记物的抗特定Ig G 的抗体可以直接购买作为标记的二抗。最常用的 一HRP标记的二抗 l TBST洗涤 l ECL试剂作用 I 种是酶连的二抗,印迹用酶连二抗处理后,再用 X.光片曝光、显影 l 适当的底物溶液处理,当酶纯化底物生成有颜色的 产物时,就会产生可见的区带,指示所要研究的蛋 结果分析 白质的位置。在酶连抗体中使用的酶通常是碱性 磷酸酶或辣根过氧化物酶。碱性磷酸酶可以将无 色的底物5一溴一4一氯吲哚磷酸盐(BCIP)转化为蓝色 蛋白质印迹法首先是要将电泳后分离的蛋白 质从凝胶中转移到纤维素膜上,通常有两种方 法:毛细管印迹法和电泳印迹法。毛细管印迹法是 将凝胶放在缓冲液浸湿的滤纸上,在凝胶上放一片 纤维素膜,再在上面放一层滤纸等吸水物质并 的产物;而辣根过氧化物酶可以以H O:为底物,将 3一氨基.9 乙基咔唑氧化成褐色产物或将4一氯萘酚 氧化成蓝色产物。另一种检测辣根过氧化物酶的 方法是用增强化学发光法,辣根过氧化物酶在H:O: 存在下,氧化化学发光物质鲁米诺(1uminol,氨基苯 用重物压好,缓冲液就会通过毛细作用流过凝胶。 缓冲液通过凝胶时会将蛋白质带到纤维素膜 二酰一肼)并发光,在化学增强剂存在下光强度可 以增大1000倍,通过将印迹放在照相底片上感光 就可以检测辣根过氧化物酶的存在。除了酶连二 抗作为指示剂,也可以使用其它指示剂,主要包括 以下一些:T125标记的二抗:可以通过放射性自显 影检测。荧光素异硫氰酸盐标记的二抗:可以通过 上,纤维素膜可以与蛋白质通过疏水相互作用 产生不可逆的结合。这个过程持续过夜,就可以将 凝胶中的蛋白质转移到纤维素膜上。但这种 方法转移的效率较低,通常只能转移凝胶中一小部 分蛋白质(10% 20%)。电泳印迹可以更快速有 2010年第l期 ‘埴用投木。 在紫外灯下产生荧光来检测。T125标记金黄色葡 于内参在各组织和细胞中的表达相对恒定,借助检 萄球菌蛋白A(ProteinA):ProteinA可以与IgG的 测每个样品内参的量就可以用于校正上样误差,这 Fc区特异性的结合,因此ProteinA可以代替二抗: 标记的二抗:二抗通过微小的金颗粒包裹,与一抗 样半定量的结果才更为可信。此外使用内参可以 Western Blot显色或者发光体系是否正常。 1125标记的ProteinA通过放射性自显影检测。金 作为空白对照,检测蛋白转膜情况是否完全、整个 结合时可以表现红色。生物素结合的二抗:印迹用 常用的蛋白质内参有GAPDH和细胞骨架蛋 生物素结合的二抗处理后,再用碱性磷酸酶或辣根 过氧化物酶标记的凝集素处理。生物素可以与凝 集素紧密结合,这种方法实际上相当于通过生物素 与凝集素的紧密结合将二抗与酶连接,通过酶的显 色反应就可以进行检测。这种方法的优点是由于 生物素是一个小分子蛋白,一个抗体上可以结合多 个生物素,也就可以结合多个酶连接的凝集素,可 以大大增强显色反应的信号。除了使用抗体或蛋 白作为检测特定蛋白的探针以外,有时也使用其它 探针如放射性标记的DNA,可以检测印迹中的DNA 结合蛋白。 western blot结果检测:化学发光法检测,膜与 化学发光底物孵育,经x胶片曝光显影。图片扫 描保存为电脑文件,并用GIS1000分析软件将图片 上每个特异条带灰度值的数字化。western blot数 据分析:目的蛋白的灰度值除以内参GAPDF的灰 度值以校正误差,所得结果代表某样品的目的蛋白 相对含量。 4注意事项 内参即是内部参照,对于哺乳动物细胞表达来 说一般是指由管家基因编码表达的蛋白,它们在各 组织和细胞中的表达相对恒定,在检测蛋白的表达 水平变化时常用它来做参照物。其作用是校正蛋 白质定量、上样过程中存在的实验误差,保证实验 结果的准确性。 在Western Blotting中使用内参其实就是在 WB过程中的另外用内参对应的抗体检测内参,这 样在检测目的产物的同时可以检测内参的表达,由 白beta actin或beta.tubulin。一般要选择一个在处 理因素作用的条件下蛋白含量不会发生改变的蛋 白作内参。 为了让实验更加严谨有说服力都要设计对照 实验,对照分为:阳性对照(最好有标准品(比如P— actin,GAPDH)或阳性血清);阴性对照(测血时用 相应小鼠未免疫血清(即正常血);空白对照(不加 一抗,用PBS代替);无关对照(用无关抗体)。一 抗、二抗的浓度一般要参照抗体说明书选择最适当 的比例,一抗二抗的选择直接影响实验结果以及背 景的深浅。实验设计时所采用的抗原批次要一样, 尽量的避免人为的带来个体差异。特别在做裂解 液时更要注意所采用的操作条件,尽可能的排除可 变因素给实验带来不确定性。凝胶的质量直接影 响以后的实验结果,要特别注意几点:凝胶要均一 没有气泡;积层胶与分离胶界面要水平;AP和TEM— ED的量不能过多,太多会导致胶易脆裂;拔梳子 时要快,尽量保证点样孔平整。电泳、转膜时特别 要注意正负极,电压电流都不能过高;转膜时“三 明治”的叠放次序不错,同时要防止产生气泡;尽 量让电转温度保持在10度以下,冰浴为宜。封闭 时一般在室温下2h就够了,但是要注意如果是生 物素标记的二抗就不宜用牛奶,因为牛奶中含有生 物素,用BSA效果更好。加一抗二抗要严格保证 反应时间,洗膜要注意尽可能地将一抗二抗洗净, 有利于降低背景;还要注意一抗二抗的匹配。在 显色发光时要特别注意二抗所对应的显色方法,特  以看得清楚目的条带为标准。 别是在发光时要注意发光时间和显影时间的控制,

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